Primera producción de juveniles de Pámpano Amarillo (Trachinotus carolinus) mediante reproducción en cautiverio y cultivo larvario en el sureste de México
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
El Pámpano Amarillo (Trachinotus carolinus) es una especie emergente para la acuicultura marina debido a su rápido crecimiento, alto valor comercial y capacidad de adaptación a las condiciones de cautiverio. Sin embargo, la producción confiable de juveniles en laboratorio sigue siendo uno de los principales obstáculos para su expansión comercial. En el presente estudio se evaluó la viabilidad técnica de la reproducción en cautiverio, el cultivo larvario, la preengorda y la producción de juveniles de T. carolinus en condiciones tropicales. Se indujo hormonalmente el desove de un lote de reproductores mantenidos en cautiverio durante más de 3 años mediante la administración de gonadotropina coriónica humana (hCG), lo que dio lugar a desoves espontáneos y a la obtención de huevos fecundados. Las larvas se cultivaron mediante la técnica de agua verde, utilizando Nannochloropsis sp., rotíferos enriquecidos (Brachionus plicatilis) y nauplios y metanauplios de Artemia salina, seguidos de la incorporación gradual de microdietas mediante coalimentación. La apertura de la boca ocurrió a los 3 días después de la eclosión (dde), la flexión de la notocorda a los 10 dde y la metamorfosis a los 23 dde. A los 30 dde, los juveniles alcanzaron un peso corporal promedio de 0.9 ± 0.4 g y posteriormente fueron transferidos a sistemas de preengorda, donde mantuvieron una alta supervivencia y un crecimiento sostenido. En conjunto, se logró producir juveniles viables, lo que demuestra que la tecnología para la producción de juveniles de T. carolinus en laboratorio puede implementarse con éxito en condiciones tropicales. Estos resultados proporcionan una base práctica para el suministro de juveniles y respaldan la expansión del cultivo de T. carolinus en el Golfo de México y la región del Caribe.
Descargas
Detalles del artículo
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Este es un artículo de acceso abierto distribuido bajo una licencia Creative Commons Attribution 4.0, que le permite compartir y adaptar el trabajo, siempre que dé el crédito apropiado al autor o autores originales y la fuente, proporcione un enlace a Creative Commons licencia, e indicar si se realizaron cambios. Las figuras, tablas y otros elementos del artículo están incluidos en la licencia CC BY 4.0 del artículo, a menos que se indique lo contrario. El título de la revista está protegido por derechos de autor y no está sujeto a esta licencia. La escritura de licencia completa se puede ver aquí.
Métrica
Citas
Anderson RO, Neumann RM. 1996. Length, weight, and associated structural indices. In: Murphy BR, Willis DW (eds.), Methods for Fish Biology. Bethesda (United States): American Fisheries Society. p. 447-482.
Cavalin FG, Weirich CR. 2009. Larval performance of aquacultured Florida pompano (Trachinotus carolinus) fed rotifers (Brachionus plicatilis) enriched with selected commercial diets. Aquaculture. 292:67-73.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.03.042
Corby TL, Ngo THV, Nguyen KQ, Araujo A, Strebel L, Velasquez S, Rhodes M, Bruce TJ, Riche M, Davis DA. 2025. Comparison and efficacy of soy-based ingredients in practical diets for Florida pompano (Trachinotus carolinus). Aquacult Int. 33:718.
https://doi.org/10.1007/s10499-025-02395-w
Cruz-López H, Pascual C, Rosas C, Domingues P, Figueroa I, Sanchez A, Gallardo P. 2025. Protein hydrolysates from fish waste: nutritional characteristics and its inclusion in diets for Octopus maya. PLoS One 20(4): e0321572.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0321572
Cunha VL, Marcelo RP, Marcelo HO, Ricardo VR, Luís AS. 2013. Feeding rate and frequency on juvenile pompano growth. Pesq Agropec Brasília. 48:950-954.
https://doi.org/10.1590/S0100-204X2013000800020
Gallardo P, Gaxiola G, Soberano S, Taboada G, Pérez M, Rosas C, Cuzon G, Espinosa L, Sotelo A. 2012. Nutritive value of diets containing fish silage for juvenile Litopenaeus vannamei (Bonne, 1931). J Sci Food Agricult. 92(11):2320-2325.
https://doi.org/10.1002/jsfa.5632
Gopakumar G, Abdul Nazar AK, Jayakumar R, Tamilmani G, Kalidas C, Sakthivel M, Rameshkumar P, Hanumantarao G, Premjothi R, Balamurugan V, et al. 2012. Broodstock development through regulation of photoperiod and controlled breeding of silver pompano, Trachinotus blochii (Lacepede, 1801) in India. Indian J Fish. 59(1):53-57.
Hamed SS, Jiddawi NS, Bwathondi PO, Mmochi AJ. 2016. Effect of feeding frequency and feeding rate on growth performance of juvenile silver pompano, Trachinotus blochii. West Indian Ocean J Mar Sci. 15(1):39-47.
Honebrink RR. 2000. A Review of the Biology of the Family Carangidae, with Emphasis on Species found in Hawaiian Waters. Honolulu (United States): Hawai’i Department of Land and Natural Resources, Division of Aquatic Resources. DAR Technical Report, No. 20-01. 37 p.
Hoff FH, Rowell E, Pulver T. 1972. Artificially induced spawning of the Florida pompano under controlled conditions. Proc Annu Workshop World Maric Soc. 3:53-64.
https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.1972.tb00047.x
Kloth TC. 1980. Observations on the spawning behavior of captive Florida Pompano, Trachinotus carolinus, Copeia. (4):884.
https://doi.org/10.2307/1444473
Ma Z, Guo H, Zheng P, Wang L, Jiang S, Qin JG, Zhang D. 2014a. Ontogenetic development of digestive functionality in golden pompano Trachinotus ovatus (Linnaeus 1758). Fish Physiol Biochem. 40:1157-1167.
https://doi.org/10.1007/s10695-014-9912-0
Ma Z, Zheng P, Guo H, Zhang N, Jiang S, Zhang D, Qin JG. 2014b. Jaw malfromation of hatchery reared golden pompano Trachinotus ovatus (Linnaeus 1758) larvae. Aquacult Res. 47(4):114-1149.
https://doi.org/10.1111/are.12569
McMaster MF, Kloth TC, Coburn JF. 2003. Prospects for commercial pompano mariculture. Louisville (United States): Aquaculture America. Technical report. 15 p.
https://mariculturetechnology.com/wp-content/uploads/2019/07/AquacultureAmerica03.pdf
Main KL, Rhody N, Nystrom M, Resley M. 2007. Species profile – Florida Pompano. Stoneville (United States): Southern Regional Aquaculture Centre. Facts sheet, No. 7206. 6p.
Mylonas CC, Zohar Y. 2001. Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Rev Fish Biol Fisheries. 10(4):463-491.
https://doi.org/10.1023/A:1012279814708
Morgan AN, Fogelson SB, Wills PS, Mincer T, Mejri S, Page A. 2024. Embryonic and early larval development of Florida pompano, Trachinotus carolinus. J World Aquaculture Soc. 55(4):e13077.
https://doi.org/10.1111/jwas.13077
Na-Nakorn U, Manoch K, Brian S, Shenna K, Torres M, Masamishi N, Wansuk S, Mojena PM, Cong Z. 2023. Current status of carangid aquaculture and way forward. J Agric Nat Res. 57:541-558.
https://doi.org/10.34044/j.anres.2023.57.3.18
Nazar AKA, Jayakumar R, Tamilmani G, Sakthivel M, Kalidas C, Ramesh K, Anbarasu P, Sirajudeen S, Balamurugan V, Jayasingh M, et al. 2012. Larviculture and seed production of the silver pompano, Trachinotus blochii (Lacepede, 1801) for the first time in India. Indian J Fisheries. 59(3):83-87.
Ranjan R, Megarajan S, Xavier B, Ghosh S, Santhosh B, Gopalakrishnan A. 2018. Broodstock development, induced breeding and larval rearing of Indian pompano, Trachinotus mookalee, (Cuvier, 1832)–A new candidate species for aquaculture. Aquaculture. 495:550-557.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.06.039
Riley KL, Weirich CR, Cerino D. 2009. Development and growth of hatchery-reared larval Florida pompano (Trachinotus carolinus). Fish Bull. 107(3):318-328.
Rojo-Cebreros AH, Ibarra-Castro L, Guerrero-Carlock E, Sánchez-Téllez JL, Alvarez-Lajonchère, L. 2017. Pilot-scale production of the rotifer Brachionus sp. under different culture systems. Rev Biol Mar Oceanog. 52(3):539-549.
https://dx.doi.org/10.4067/S0718-19572017000300011
Smith-Vaniz WF, Walsh SJ 2019. Indo-West Pacific species of Trachinotus with spots on their sides as adults, with description of a new species endemic to the Marquesas Islands (Teleostei: Carangidae). Zootaxa. 4651:1-37.
https://doi.org/10.11646/zootaxa.4651.1.1
Van der Kraak G, Pankhurst NW, Peter RE, Lin HR. 1989. Lack of antigenicity of human chorionic gonadotropin in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) and goldfish (Carassius auratus). Aquaculture. 78:81-86.
Weirich CR, Groat DR, Reigh RC, Chesney J, Malone RF. 2006. Effect of feeding strategies on production characteristics and body cComposition of Florida pompano reared in marine recirculating systems. N Am J Aquac. 68:330-338.
Weirich CR, Riley KL. 2007. Volitional spawning of Florida pompano, Trachinotus carolinus, induced via administration of gonadotropin releasing hormone analogue (GnRHa). J Appl Aquaculture. 19(3):47-60.
https://doi.org/10.1300/J028v19n03_03
Weirich CR, Riley KL, Riche M, Main KL, Wills PS, Illán G, Cerino DS, Pfeiffer TJ. 2021. The status of Florida pompano, Trachinotus carolinus, as a commercially ready species for U.S. marine aquaculture. J World Aquaculture Soc. 52(3):731-763.
https://doi.org/10.1111/jwas.12809
Wills PS, Robinson C, Riche M, Snyder S, Davis M, Illan G, Weirich C, Perron F, Mejri S, King LE, et al. 2023. Culture manual for the Florida pompano Trachinotus carolinus (Linnaeus, 1766) (1st ed.). Fort Pierce (United States): Florida Atlantic University Harbor Branch Oceanographic Institute. 159 p.
https://doi.org/10.13140/RG.2.2.25494.36166
Zohar Y, Mylonas CC. 2001. Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: From hormones to genes. Aquaculture. 197(1-4):99-136.
Zhenzhen X, Ling X, Dengdong W, Chao F, Qiongyu L, Zihao L, Xiaochun L, Yong Z, Shuisheng L, Haoran L. 2014. Transcriptome analysis of the Trachinotus ovatus: identification of reproduction, growth and immune-related genes and microsatellite markers. PLoS ONE. 9(10):e109419.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0109419.
Zohar Y, Zmora N, Trudeau, VL, Muñoz-Cueto JA, Golan M. 2022. A half century of fish gonadotropin-releasing hormones: breaking paradigms. J Neuroendocrinol. 34(5):e13069.